淀粉酶活性的測定(酶活力測定的注意事項有哪些)
1.酶活力測定的注意事項有哪些
1.底物濃度 除選擇適合的底物外，在實際應用中更多考慮的是底物濃度。由于[S]與反應速度V成雙曲線關(guān)系，在酶活性測定時，要求[S]達到一定水平以保證酶活性與酶量成正比。[S]范圍一般選擇在10~20Km為宜，此時反應速度基本達到最大反應速度，測定的誤差在可接受范圍。
2.酶濃度 在反應條件一定時，酶濃度與反應速度成正比。按照中間產(chǎn)物學說，只有[S]>>[E]時，酶才能被底物分子飽和，反應速度才能達到最大值。因此當標本酶活力過高時，應將標本適當稀釋后再加以測定。
3.溫度 不同的酶最適溫度可以不同，多數(shù)酶的最適溫度在37~40℃，高于或低于最適溫度，酶活性都降低。目前，酶活性的測定溫度尚未統(tǒng)一，但常規(guī)實驗室多使用37℃。溫度對酶促反應的影響程度通常用溫度系數(shù)（Q10）表示。溫度系數(shù)指溫度每升高10℃，化學反應速度增加的倍數(shù)。Q10通常為l~2。由溫度系數(shù)得知，溫度的變化對酶活性有著重要影響，因此要求酶活性測定要在恒溫條件下進行，溫度波動要控制在±1℃。
4.離子強度和pH值 在最適pH時，酶的活性最強，高于或低于最適pH，酶的活性都降低，多數(shù)酶的最適pH在5~8之間。在測定酶活性時，要求緩沖液具有足夠的緩沖容量，以便使pH值保持穩(wěn)定。血漿或血清標本含有多種緩沖溶質(zhì)，具有較強的緩沖能力。為了防止血漿或血清標本緩沖溶質(zhì)對反應液酸堿度的影響，使pH不致偏離設定值，標本用量不宜過大，血漿或血清標本體積/反應液體積≤1/10為宜。
5 輔助因子 某些金屬離子和維生素類輔酶是結(jié)合酶的輔助因子，例如Zn2+是羧基肽酶的輔基，Mo6+是黃嘌呤氧化酶的輔基，NADH是不需氧脫氫酶的輔酶。這些酶離開它們的輔基或輔酶就不能表現(xiàn)活性，因此在酶活性測定時，就要保證輔基或輔酶的供給。
6.激活劑 有些酶在有激活劑存在時才有活性或活性較高，例如Mg2+是肌酸激酶的激活劑，Cl-是淀粉酶的激活劑。因此在酶活性測定時，也要滿足酶對激活劑的需要。
7.抑制劑 酶的抑制可分為不可逆抑制和可逆抑制，后者又可分為競爭性抑制和非競爭性抑制。重金屬離子和砷化物對巰基酶的抑制、有機磷對羥基酶的抑制屬于不可逆抑制；丙二酸對琥珀酸脫氫酶的抑制、磺胺類藥物對二氫葉酸合成酶的抑制屬于競爭性抑制；哇巴因?qū)a+,K+-ATP酶的抑制屬于非競爭性抑制。抑制劑使酶活性降低，在測定酶活性時，應避免抑制劑的影響。
綜上所述，測定酶活性時，最適條件的選擇應該遵循最適底物濃度、最適溫度、最適pH值、滿足輔助因子和激活劑、避免抑制劑的原則。
2.酶活力測定的注意事項有哪些?
1.底物濃度 除選擇適合的底物外，在實際應用中更多考慮的是底物濃度。由于[S]與反應速度V成雙曲線關(guān)系，在酶活性測定時，要求[S]達到一定水平以保證酶活性與酶量成正比。[S]范圍一般選擇在10~20Km為宜，此時反應速度基本達到最大反應速度，測定的誤差在可接受范圍。
2.酶濃度 在反應條件一定時，酶濃度與反應速度成正比。按照中間產(chǎn)物學說，只有[S]>>[E]時，酶才能被底物分子飽和，反應速度才能達到最大值。因此當標本酶活力過高時，應將標本適當稀釋后再加以測定。
3.溫度 不同的酶最適溫度可以不同，多數(shù)酶的最適溫度在37~40℃，高于或低于最適溫度，酶活性都降低。目前，酶活性的測定溫度尚未統(tǒng)一，但常規(guī)實驗室多使用37℃。溫度對酶促反應的影響程度通常用溫度系數(shù)（Q10）表示。溫度系數(shù)指溫度每升高10℃，化學反應速度增加的倍數(shù)。Q10通常為l~2。由溫度系數(shù)得知，溫度的變化對酶活性有著重要影響，因此要求酶活性測定要在恒溫條件下進行，溫度波動要控制在±1℃。
4.離子強度和pH值 在最適pH時，酶的活性最強，高于或低于最適pH，酶的活性都降低，多數(shù)酶的最適pH在5~8之間。在測定酶活性時，要求緩沖液具有足夠的緩沖容量，以便使pH值保持穩(wěn)定。血漿或血清標本含有多種緩沖溶質(zhì)，具有較強的緩沖能力。為了防止血漿或血清標本緩沖溶質(zhì)對反應液酸堿度的影響，使pH不致偏離設定值，標本用量不宜過大，血漿或血清標本體積/反應液體積≤1/10為宜。
5 輔助因子 某些金屬離子和維生素類輔酶是結(jié)合酶的輔助因子，例如Zn2+是羧基肽酶的輔基，Mo6+是黃嘌呤氧化酶的輔基，NADH是不需氧脫氫酶的輔酶。這些酶離開它們的輔基或輔酶就不能表現(xiàn)活性，因此在酶活性測定時，就要保證輔基或輔酶的供給。
6.激活劑 有些酶在有激活劑存在時才有活性或活性較高，例如Mg2+是肌酸激酶的激活劑，Cl-是淀粉酶的激活劑。因此在酶活性測定時，也要滿足酶對激活劑的需要。
7.抑制劑 酶的抑制可分為不可逆抑制和可逆抑制，后者又可分為競爭性抑制和非競爭性抑制。重金屬離子和砷化物對巰基酶的抑制、有機磷對羥基酶的抑制屬于不可逆抑制；丙二酸對琥珀酸脫氫酶的抑制、磺胺類藥物對二氫葉酸合成酶的抑制屬于競爭性抑制；哇巴因?qū)a+,K+-ATP酶的抑制屬于非競爭性抑制。抑制劑使酶活性降低，在測定酶活性時，應避免抑制劑的影響。
綜上所述，測定酶活性時，最適條件的選擇應該遵循最適底物濃度、最適溫度、最適pH值、滿足輔助因子和激活劑、避免抑制劑的原則。
3.測定酶活性時應注意些什么?
酶的活性測定要求有適宜的特定反應條件，應注意影響酶促反應速度的各種因素應該相對恒定。
1.酶的樣品應做適當?shù)奶幚怼?.反應體系中，底物的量足夠使酶被底物飽和，以充分反映待測酶的活力。
但過高的底物濃度可能抑制酶的活性，一般底物濃度在10km以上。3.測定代謝物時應保持酶的足夠濃度。
4.應根據(jù)反應時間選擇反應的最適溫度。5.根據(jù)不同的底物和緩沖液選擇反應的最適pH。
6.為獲取最高反應速度，在反應體系中應含有適宜的輔助因子，激活劑等。7.測定酶活性時應測定酶促反應的初速度。
4.在實驗過程中應注意哪些問題,才能確保淀粉酶活性?
淀粉酶是水解淀粉和糖原的酶類總稱，通常通過淀粉酶催化水解織物上的淀粉漿料，由于淀粉酶的高效性及專一性，酶退漿的退漿率高，退漿快，污染少，產(chǎn)品比酸法、堿法更柔軟，且不損傷纖維。
淀粉酶的種類很多，根據(jù)織物不同，設備組合不同，工藝流程也不同，目前所用的退漿方法有浸漬法、堆置法、卷染法、連續(xù)洗等，由于淀粉酶退漿機械作用小，水的用量少，可以在低溫條件下達到退漿效果，具有鮮明的環(huán)保特色。淀粉酶活性中度或輕度升高還可見于一些非胰腺疾病，如腮腺炎、急性腹部疾?。ㄏ詽兇┛?、上腹部手術(shù)后、機械性腸梗阻、腸系膜血管病變、膽道梗阻及急性膽囊炎等）、服用鎮(zhèn)痛劑、酒精中毒、腎功能不良及巨淀粉酶血癥等情況，應加以注意。
5.淀粉酶活力的測定
谷物種子萌發(fā)時淀粉酶活力的測定 幾乎所有植物中都存在淀粉酶，尤其是萌發(fā)的禾谷類種子，淀粉酶活性最強。
主要是α-淀粉酶和β-淀粉酶。種子萌發(fā)時，淀粉酶活性隨萌發(fā)時間迅速增加，將淀粉分解成小分子糖類，供幼苗生長。
α-淀粉酶隨機水解淀粉的α-1,4-糖苷鍵，作為淀粉分解的起始酶而起主要作用；其水解產(chǎn)物為麥芽糖、麥芽三糖、糊精等還原性糖；β-淀粉酶水解非還原端的第二個α-1,4-糖苷鍵，水解產(chǎn)物為麥芽糖，并能使一部分糊精糖化。本實驗以萌發(fā)種子為材料，測定其中α-淀粉酶和β-淀粉酶活性的差異。
【原理】 兩種淀粉酶具有不同理化特性，α-淀粉酶不耐酸，在PH3?6以下迅速鈍化；β-淀粉酶不耐熱，在70℃下15Min則被鈍化。據(jù)此，在測定時鈍化其中之一，就可以測定出另一種酶的活力，本實驗采用加熱鈍化β-淀粉酶測出α-淀粉酶活力，再與非鈍化條件下測得的總淀粉酶活力比較，求出β-淀粉酶活力。
淀粉的水解產(chǎn)物麥芽糖及其他還原性糖能與3,5-二硝基水楊酸試劑反應，使其還原生成紅色3-氨基-5-硝基水楊酸。在一定范圍內(nèi)，其顏色深淺與淀粉酶水解產(chǎn)物的濃度成正比，可用麥芽糖（或葡萄糖）濃度表示，用比色法測定淀粉生成的還原糖的量，以單位重量樣品在一定時間內(nèi)生成的麥芽糖的量表示酶活力。
【儀器與用具】 分光光度計；離心機；恒溫水浴器；研缽；具塞刻度試管25Ml 13支，刻度吸管1ml、2ml、5Ml各1支；容量瓶50Ml 2支。 【試劑】 麥芽糖標準液（1Mg/Ml）：稱取100Mg麥芽糖，用蒸餾水溶解并定容至100Ml。
DNS試劑（3,5-二硝基水楊酸）：精確稱取3,5-二硝基水楊酸1g，溶于20Ml 12Mol/L NAOH溶液中，加入50Ml蒸餾水，再加入30g酒石酸鉀鈉，待溶解后用蒸餾水定容至100Ml。蓋緊瓶塞，勿使CO2進入。
若溶液混濁，可過濾后使用。 0?1Mol/L PH5?6的檸檬酸緩沖液：A液（0?1Mol/L檸檬酸）：稱取分析純檸檬酸21?01g，用蒸餾水溶解并定容至1L;B液（0?1Mol/L檸檬酸鈉）：稱取檸檬酸鈉29?41g用蒸餾水溶解并定容至1L；取A液55Ml與B液145Ml混勻，即為0?1Mol/L PH5?6的檸檬酸緩沖液。
1%淀粉溶液：稱取1g淀粉溶于100Ml 0?1Mol/L PH5?6的檸檬酸緩沖液中。 【方法】 1.酶液提取稱取25℃下萌發(fā)3~4天的小麥種子1?0g（芽長1?0~1?5CM），置研缽中，加少量石英砂和2Ml蒸餾水，研磨成勻漿后轉(zhuǎn)入離心管中，用7Ml蒸餾水分次將殘渣洗入離心管，提取液在室溫下放置提取15~20Min，每隔數(shù)分鐘攪動1次，使其充分提取。
然后在3000r/Min轉(zhuǎn)速下離心10Min，將上清液倒入50Ml容量瓶中，加蒸餾水定容至刻度，搖勻，即為淀粉酶原液。吸取上述淀粉酶原液5Ml，放入50Ml容量瓶中，用蒸餾水定容至刻度搖勻，即為淀粉酶稀釋液。
2?麥芽糖標準曲線制作取7支干凈的具塞刻度試管，編號，按表18-1加入試劑： 表18-1制作麥芽糖標準曲線配方表 試劑管號1234567麥芽糖標準液（ml）00.20.40.81.21.62.0蒸餾水（ml）2.01.81.61.20.80.40麥芽糖含量（mg）00.20.40.81.21.62.03,5-二硝基水楊酸（ml）2222222搖勻，置沸水浴中煮沸5Min。取出后流水冷卻，加蒸餾水定容至20Ml。
以1號管作為空白調(diào)零點，在540nM波長下比色測定。以麥芽糖含量為橫坐標，吸光度值為縱坐標，繪制標準曲線。
3?酶活力的測定取6支干凈的具塞刻度試管，編號，按表18-2進行操作。 表18-2酶活力的測定配方表 操作項目管號Ⅰ-1Ⅰ-2Ⅰ-3Ⅱ-1Ⅱ-2Ⅱ-3淀粉酶原液（ml）1.01.01.0000鈍化β-淀粉酶置70℃水浴中15Min，取出后在流水中冷卻淀粉酶稀釋液（ml）000111DNS試劑（ml）2.0002.000預保溫40℃恒溫水浴中保溫10Min1%淀粉溶液（ml）(40℃)1.01.01.01.01.01.0保溫40℃恒溫水浴中準確保溫5MinDNS試劑（ml）02.02.002.02.0搖勻，置沸水浴中5Min，取出后冷卻，加蒸餾水至20Ml，搖勻，在540nM波長下比色，記錄測定結(jié)果。
4?結(jié)果計算 用Ⅰ-2、Ⅰ-3吸光度平均值與Ⅰ-1吸光度值之差，在標準曲線上查出相應的麥芽糖含量（Mg），再按下式計算α-淀粉酶的活力（Aα），淀粉酶活性以每克鮮重所含麥芽糖毫克數(shù)（Mg/g·Min）表示： Aα=CαVTFW*t*V1(18-1) Ⅱ-2、Ⅱ-3吸光度平均值與Ⅱ-1吸光度值之差，在標準曲線上查出相應的麥芽糖含量（Mg），按式18-1計算（α+β）-淀粉酶的活性AT AT=CT*VTFW*t*V1 式中A：淀粉酶活性，Aα為α-淀粉酶的活性，AT為淀粉酶總活性，主要是α、β-淀粉酶的活性； Cα：α-淀粉酶水解淀粉生成的麥芽糖量（查標準曲線求值，以下同）； CT：（α+β）淀粉酶共同水解淀粉生成的麥芽糖量； V1：顯色所用酶液體積（Ml）; T：酶作用時間（Min）; VT：樣品稀釋液總體積（α-淀粉酶為50Ml，α+β淀粉酶為500Ml）; FW：樣品鮮重（g）。 【思考題】 1.萌發(fā)種子和干種子α-淀粉酶和β-淀粉酶活力有何差異這種變化有何生物學意義 2?實驗中設置對照的意義何在 3?α-淀粉酶和β-淀粉酶性質(zhì)有何不同作用特點有何不同。
6.淀粉酶活力的測定
-淀粉酶活力測定 α-淀粉酶活力測定
Yoo改良法：兩份各5 ml 0.5%淀粉（用pH6.0 Na2HPO4-檸檬酸緩沖液配制） 分別標記為A、B，放入40℃恒溫水浴中保溫10分鐘，A中加0.5 ml酶液，B中加0.5 ml dH2O，反應5 min后，各加5 ml 0.1 mol/L H2SO4終止反應。分別從A、B取0.5 ml反應液加入到于5ml 0. 4mmol/L I2-KI溶液顯色，620nm處測光密度OD?；盍挝欢x：5 min內(nèi)水解1mg淀粉的酶量。A(U/ ml) = ( R0-R)/ R0 *50*D
A：酶活； R0:B對應的光吸收值；R:A對應的光吸收值； D：酶的稀釋倍數(shù)
