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培養(yǎng)細(xì)胞的冷凍保存與復(fù)蘇? 概述 |? 凍存過程 |
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Polge等人(1949)發(fā)現(xiàn)了甘油對低溫下貯存的細(xì)胞具有保護(hù)作用,他們?nèi)匀灰跃舆M(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),加入甘油能夠大大提高貯存于-790C下精子的存活率。接下來的重大進(jìn)展是Luyet(1951)與Lovelock(1953)等多位學(xué)者發(fā)現(xiàn)了電解質(zhì)濃度對貯存細(xì)胞的損傷作用。他們的結(jié)論是,電解質(zhì)濃度增大是造成貯存細(xì)胞損傷的主要原因。冷凍理論后來得到Merryman(1956)、Rey(1957)以及在不同的冷凍速度既然能使細(xì)胞內(nèi)發(fā)生不同的
一、\x09復(fù)蘇
1.\x09把凍存管從液氮中取出來,立即投入37℃水浴鍋中,輕微搖動.液體都融化后(大概1-1.5分鐘),拿出來噴點酒精放到超凈工作臺里.
2.\x09把上述細(xì)胞懸液吸到裝10ml培養(yǎng)基的15ml的離心管中(用培養(yǎng)基把凍存管洗一遍,把粘在壁上的細(xì)胞都洗下來),1000轉(zhuǎn)離心5分鐘.
3.\x09把上清液倒掉,加1ml培養(yǎng)基把細(xì)胞懸浮起來.吸到裝有10ml培養(yǎng)基的10cm培養(yǎng)皿中前后左右輕輕搖動,使培養(yǎng)皿中的細(xì)胞均勻分布.
4.\x09標(biāo)好細(xì)胞種類和日期、培養(yǎng)人名字等,放到CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),細(xì)胞貼壁后換培養(yǎng)基.
5.\x093天換一次培養(yǎng)基.
二、\x09傳代
1.\x09培養(yǎng)皿中的細(xì)胞覆蓋率達(dá)到80%-90%時要傳代.
2.\x09把原有培養(yǎng)基吸掉.
3.\x09加適當(dāng)?shù)囊鹊鞍酌福芨采w細(xì)胞就行),消化1-2分鐘.
4.\x09細(xì)胞都變圓后加如入等體積的含血清的培養(yǎng)基終止消化.
5.\x09用移液槍吹打細(xì)胞,把細(xì)胞都懸浮起來.
6.\x09把細(xì)胞吸到15ml的離心管中,1000轉(zhuǎn)離心5分鐘.
7.\x09倒掉上清液,加1-2ml培養(yǎng)基,把細(xì)胞都吹起來.
8.\x09根據(jù)細(xì)胞種類把細(xì)胞傳到幾個培養(yǎng)皿中.一般,癌細(xì)胞分5個,正常細(xì)胞傳3個.繼續(xù)培養(yǎng).
三、\x09 凍存
把細(xì)胞消化下來并離心(同上).用配好的凍存液把細(xì)胞懸浮起來,分裝到滅菌的凍存管中,靜止幾分鐘,寫明細(xì)胞種類,凍存日期.4℃ 30min,-20℃ 30min,-80℃過夜,然后放到液氮灌中保存.
凍存液的配制:70%的完全培養(yǎng)基+20%FBS+10%DMSO.DMSO要慢慢滴加,邊滴邊搖.
要注意的就是無菌操作!
博凌科為解答:【材料】1.常規(guī)細(xì)胞培養(yǎng)儀器設(shè)備 恒溫水浴振蕩器。
2.培養(yǎng)液(DMEM)胎牛血清(CBS)二甲基亞砜(DMSO)【操作程序】1.細(xì)胞實驗室進(jìn)行常規(guī)消毒,紫外照射40min以上。2.培養(yǎng)液(DMEM)、0.25%胰蛋白酶(Trypsin)恒溫水浴箱370C預(yù)熱20min,備用。
3.二甲基亞砜(DMSO)在40C冰箱中冷藏30min,備用。4.從液氮保存罐中取出凍存管,立即放入400C水浴中,快速搖晃,直至凍存液完全融化。
5.將細(xì)胞懸液移入15ml離心管,緩慢加入4ml培養(yǎng)液,離心(1000r/min,5min)。6.用培養(yǎng)液懸液混懸沉淀細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度,方培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
7.記錄復(fù)蘇日期?!咀⒁馐马棥?.取細(xì)胞的過程中注意帶好防凍手套,護(hù)目鏡。
此項尤為重要,細(xì)胞凍存管可能漏入液氮,解凍時凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致爆炸。2.凍存液的問題:凍存液的配置已是常識,在這里不作詳述,但二甲基亞砜(DMSO)對細(xì)胞不是完全無毒副作用,在常溫下,二甲基亞砜對細(xì)胞的毒副作 較大,因此,必須在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。
如果復(fù)蘇溫度太慢,會造成細(xì)胞的損傷,二甲基亞砜(DMSO)最好選擇進(jìn)口產(chǎn)品。3.離心前須加入少量培養(yǎng)液。
細(xì)胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度,以減少對細(xì)胞的損傷。4.離心問題:目前主要有兩種見解。
一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng),第二天換液。因為離心的目的是兩個,去除 DMSO,去除死細(xì)胞,這個是標(biāo)準(zhǔn)流程,但對一般人來說,把握不好離心轉(zhuǎn)速和時間,轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少,細(xì)胞就全被扔掉了,轉(zhuǎn)過了活細(xì)胞會受壓過大, 死亡。
此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細(xì)胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對細(xì)胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液 體前倒凈,且一定倒干凈。
我在試驗中按照常規(guī)的離心分裝的方法進(jìn)行復(fù)蘇,結(jié)果無有異常。5.細(xì)胞貼壁少的問題:教科書中說明凍存細(xì)胞解凍時1ml細(xì)胞液要加10ml-15m培養(yǎng)液,而在我的試驗中的經(jīng)驗總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。
6.復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題:試驗中我的經(jīng)驗總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中,分裝過多,細(xì)胞濃度過低,不利于細(xì)胞的貼壁。7.加培養(yǎng)基的量放入問題:這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度,從如果你加培養(yǎng)基的太少,那么DMSO的濃度就會比較大,就會影響 細(xì)胞生長,從以前的資料來看,DMSO的濃度在小于0.5%的時候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響,還有一個說法是1%。
所以如果你的凍存液的濃度是 10%DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。
細(xì)胞凍存與復(fù)蘇步驟注意事項一、原理在不加任何條件下直接凍存細(xì)胞時,細(xì)胞內(nèi)和外環(huán)境中的水都會形成冰晶,能導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)發(fā)生機械損傷、電解質(zhì)升高、滲透壓改變、脫水、PH改變、蛋白變性等,能引起細(xì)胞死亡。
如向培養(yǎng)液加入保護(hù)劑,可使冰點降低。在緩慢的凍結(jié)條件下,能使細(xì)胞內(nèi)水份在凍結(jié)前透出細(xì)胞。
貯存在-130℃以下的低溫中能減少冰晶的形成。細(xì)胞復(fù)蘇時速度要快,使之迅速通過細(xì)胞最易受損的-5~0℃,細(xì)胞仍能生長,活力受損不大。
目前常用的保護(hù)劑為二甲亞砜(DMSO)和甘油,它們對細(xì)胞無毒性,分子量小,溶解度大,易穿透細(xì)胞。二、操作步驟(一)凍存1、消化細(xì)胞(同實驗二),將細(xì)胞懸液收集至離心管中。
2、1000rpm離心10分鐘,棄上清液。3、沉淀加含保護(hù)液的培養(yǎng),計數(shù),調(diào)整至5*106/ml左右。
4、將懸液分至凍存管中,每管1 ml。5、將凍存管口封嚴(yán)。
如用安瓿瓶則火焰封口,封口一定要嚴(yán),否則復(fù)蘇時易出現(xiàn)爆裂。6、貼上標(biāo)簽,寫明細(xì)胞種類,凍存日期。
凍存管外拴一金屬重物和一細(xì)繩。7、按下列順序降溫:室溫→4℃(20分鐘〕→冰箱冷凍室(30分鐘)→低溫冰箱(-30℃ 1小時)→氣態(tài)氮(30分鐘)→液氮。
注意:操作時應(yīng)小心,以免液氮凍傷。液氮定期檢查,隨時補充,絕對不能揮發(fā)干凈,一般30立升的液氮能用1~1.5月。
(二)復(fù)蘇1. 細(xì)胞實驗室進(jìn)行常規(guī)消毒,紫外照射40min以上。2. 培養(yǎng)液(DMEM)、0.25%胰蛋白酶(Trypsin)恒溫水浴箱370C預(yù)熱20min,備用。
3. 二甲基亞砜(DMSO)在40C冰箱中冷藏30min,備用。4. 從液氮保存罐中取出凍存管,立即放入400C水浴中,快速搖晃,直至凍存液完全融化。
5. 將細(xì)胞懸液移入15ml離心管,緩慢加入4ml培養(yǎng)液,離心(1000r/min,5min)。6. 用培養(yǎng)液懸液混懸沉淀細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度,方培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
7. 記錄復(fù)蘇日期?!咀⒁馐马棥?. 取細(xì)胞的過程中注意帶好防凍手套,護(hù)目鏡。
此項尤為重要,細(xì)胞凍存管可能漏入液氮,解凍時凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致爆炸。2. 凍存液的問題:凍存液的配置已是常識,在這里不作詳述,但二甲基亞砜(DMSO)對細(xì)胞不是完全無毒副作用,在常溫下,二甲基亞砜對細(xì)胞的毒副作 較大,因此,必須在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。
如果復(fù)蘇溫度太慢,會造成細(xì)胞的損傷,二甲基亞砜(DMSO)最好選擇進(jìn)口產(chǎn)品。3. 離心前須加入少量培養(yǎng)液。
細(xì)胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度,以減少對細(xì)胞的損傷。4. 離心問題:目前主要有兩種見解。
一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng),第二天換液。因為離心的目的是兩個,去除 DMSO,去除死細(xì)胞,這個是標(biāo)準(zhǔn)流程,但對一般人來說,把握不好離心轉(zhuǎn)速和時間,轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少,細(xì)胞就全被扔掉了,轉(zhuǎn)過了活細(xì)胞會受壓過大, 死亡。
此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細(xì)胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對細(xì)胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液 體前倒凈,且一定倒干凈。
我在試驗中按照常規(guī)的離心分裝的方法進(jìn)行復(fù)蘇,結(jié)果無有異常。5. 細(xì)胞貼壁少的問題:教科書中說明凍存細(xì)胞解凍時1ml細(xì)胞液要加10ml-15m培養(yǎng)液,而在我的試驗中的經(jīng)驗總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。
6. 復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題:試驗中我的經(jīng)驗總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中,分裝過多,細(xì)胞濃度過低,不利于細(xì)胞的貼壁。7. 加培養(yǎng)基的量放入問題:這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度,從如果你加培養(yǎng)基的太少,那么DMSO的濃度就會比較大,就會影響 細(xì)胞生長,從以前的資料來看,DMSO的濃度在小于0.5%的時候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響,還有一個說法是1%。
所以如果你的凍存液的濃度是 10%DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。
樓主你好;
心肺復(fù)蘇ABC步驟;
A 開放氣道
拍搖患者并大聲詢問,手指甲掐壓人中穴約五秒,如無反應(yīng)表示意識喪失。這時應(yīng)使患者水平仰臥,解開頸部鈕扣,注意清除口腔異物,使患者仰頭抬頦,用耳貼近口鼻,如未感到有氣流或胸部無起伏,則表示已無呼吸。
B 口對口人工 呼吸
在保持患者仰頭抬頦前提下,施救者用一手捏閉的鼻孔 (或口唇 ),然后深吸一大口氣,迅速用力向患者口 (或鼻 )內(nèi)吹 氣 , 然后放松鼻孔(或口唇),照此每5秒鐘反復(fù)一次,直到恢復(fù)自主呼吸。
每次吹氣間隔1.5秒,在這個時間搶救者應(yīng)自己深呼吸一次,以便繼續(xù)口對口呼吸,直至專業(yè)搶救人員的到來。
C 人工循環(huán)
檢查心臟是否跳動,最簡易、最可靠的是頸動脈。搶救者用2-3個手指放在患者氣管與頸部肌肉間輕輕按壓,時間不少于10秒。
如患者停止心跳,搶救者應(yīng)握緊拳頭,拳眼向上,快速有力猛擊患者胸骨正中下段一次。此舉有可能使患者心臟復(fù)跳,如一次不成功可按上述要求再次扣擊一次。
如心臟不能復(fù)跳,就要通過胸外按壓,使心臟和大血管血液產(chǎn)生流動。以維持心、腦等主要器官最低血液需要量。
選擇胸外心臟按壓部位:先以右手的中指、示指定出肋骨下緣,而后將右手掌側(cè)放在胸骨下1/3,再將左手放在胸骨上方,左手拇指鄰近右手指,使左手掌底部在劍突上。右手置于左手上,手指間互相交錯或伸展。按壓力量經(jīng)手跟而向下,手指應(yīng)抬離胸部。
·胸外心臟按壓方法:急救者兩臂位于病人胸骨的正上方,雙肘關(guān)節(jié)伸直,利用上身重量垂直下壓,對中等體重的成人下壓深度為3—4厘米,而后迅速放松,解除壓力,讓胸廓自行復(fù)位。如此有節(jié)奏地反復(fù)進(jìn)行,按壓與放松時間大致相等,頻率為每分鐘80—100次。
一人心肺復(fù)蘇方法:當(dāng)只有一個急救者給病人進(jìn)行心肺復(fù)蘇術(shù)時,應(yīng)是每做30次胸心臟按壓,交替行2次人工呼吸。
二人心肺復(fù)蘇方法:當(dāng)有兩個急救者給病人進(jìn)行心肺復(fù)蘇術(shù)時,首先兩個人應(yīng)呈對產(chǎn)位置,以便于互相交換。此時,一個人做胸外心臟按壓;另一個人做人工呼吸。兩人可以數(shù)著1、2、3進(jìn)行配合,每按壓心臟30次,口對口或口對鼻人工呼吸2次。)
注意事項 ;
1、口對口吹氣量不宜過大,一般不超過1200毫升,胸廓稍起伏即可。吹氣時間不宜過長,過長會引起急性胃擴張、胃脹氣和嘔吐。吹氣過程要注意觀察患(傷)者氣道是否通暢,胸廓是否被吹起。
2、胸外心臟按術(shù)只能在患(傷)者心臟停止跳動下才能施行。
3、口對口吹氣和胸外心臟按壓應(yīng)同時進(jìn)行,嚴(yán)格按吹氣和按壓的比例操作,吹氣和按壓的次數(shù)過多和過少均會影響復(fù)蘇的成敗。
4、胸外心臟按壓的位置必須準(zhǔn)確。不準(zhǔn)確容易損傷其他臟器。按壓的力度要適宜,過大過猛容易使胸骨骨折,引起氣胸血胸;按壓的力度過輕,胸腔壓力小,不足以推動血液循環(huán)。
5、施行心肺復(fù)蘇術(shù)時應(yīng)將患(傷)者的衣扣及褲帶解松,以免引起內(nèi)臟損傷。
2005年底美國心臟學(xué)會(AHA)發(fā)布了新版CPR急救指南,與舊版指南相比,主要就是按壓與呼吸的頻次由15:2調(diào)整為30:2
1.先從液氮罐內(nèi)迅速拿出需要復(fù)蘇的細(xì)胞,迅速放入37攝氏度的水浴中,并不停的搖晃,注意瓶口不要碰到水面,以防污染細(xì)胞;
2.將盛入37攝氏度水浴中的細(xì)胞連同燒杯一起帶入細(xì)胞房,待細(xì)胞均勻融化后,拿出;
3.將細(xì)胞懸液倒入離心管,加入3-4滴完全培養(yǎng)基,放入離心機中離心1500轉(zhuǎn)(調(diào)兩檔),3-4min,觀察細(xì)胞沉淀情況,如果太少,再次離心3-4min;
4.將離心管拿出,倒掉上清液,在離心管中加入2滴培養(yǎng)液,并用彎頭滴管伸入液面以下不斷吹打(注意不要將彎頭伸出液面,以防有氣泡產(chǎn)生,影響細(xì)胞生長);
5.將新的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中加入兩滴管培養(yǎng)液,再將離心管中的細(xì)胞轉(zhuǎn)入新的細(xì)胞培養(yǎng)瓶(以防加入時產(chǎn)生氣泡)并使細(xì)胞散步均勻;
6.用酒精擦拭瓶身,顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)(有透明的圓的細(xì)胞漂浮其中),培養(yǎng)瓶上寫明日期及培養(yǎng)細(xì)胞的名稱;
7.將培養(yǎng)瓶的蓋子稍松,放入CO2培養(yǎng)(便于CO2進(jìn)入)待第二天觀察(細(xì)胞一般4小時貼壁);
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